Актуальные проблемы ветеринарной медицины : сборник научных трудов № 153

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ 

ДЕПАРТАМЕНТ ОБРАЗОВАНИЯ, НАУЧНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ  

ПОЛИТИКИ И РЫБОХОЗЯЙСТВЕННОГО КОМПЛЕКСА 

САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ  
УНИВЕРСИТЕТ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ 

___________________________________________ 

 
 
 
 
 

ISSN № 0135-3195 

 
 
 
 
 
 

АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ  

ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ 

 

Сборник научных трудов № 153  

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Санкт-Петербург 

2022 

УДК: 619 (063) 
 
 
Актуальные проблемы ветеринарной медицины: Сборник научных 

трудов № 153 / редкол.: К.В. Племяшов, А.А. Сухинин, Г.С.  Никитин  
[и др.]; МСХ РФ, СПбГУВМ. – Санкт-Петербург : Изд-во СПбГУВМ, 
2022. - 83 с. 

 
 
 
Редакционная коллегия: 
 
Ректор СПбГУВМ Племяшов К.В. (отв. редактор) 
Проф. Сухинин А.А. (зам. отв. редактора) 
Доц. Никитин Г.С. (зам. отв. редактора)  
Проф. Карпенко Л.Ю. 
Проф. Белова Л.М. 
Проф. Яшин А.В. 
Проф. Крячко О.В. 
Проф. Пристач Н.В.  
Доц. Козыренко О.В. 
Доц. Нечаев А.Ю.  
Доц. Щипакин М.В. 
Доц. Иванов А.А. 
 
 
 
 
 

Утвержден на заседании редакционно-издательского совета  

ФГБОУ ВО СПбГУВМ 

 
 
 

Зав. редакционно-издательским центром Иванова С.Э. 

 
 
 

DOI: 10.52419/0135-3195-2022-153 

 
 

© ФГБОУ ВО СПбГУВМ, 2022 

УДК 616-072.2:611.145.2:636.4 

УСОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МЕТОДА УСТАНОВКИ КАТЕТЕРА 

В ЯРЕМНУЮ ВЕНУ КАРЛИКОВОЙ СВИНЬЕ 

Березкин В.А. ветеринарный врач, «АО «НПО «ДОМ ФАРМАЦИИ»;  
Семененко Н.А. асп., каф. организации, экономики и управления ветеринарным 
делом, зав. каф. доц. Орехов Д.А. 

 

В современном мире все чаще замечается тенденция к экзотическим 

животным компаньонам, к таким видам можно отнести и карликовых свиней. 
Так же карликовые свиньи являются одной из наиболее ценных моделей 
in vivo в доклинических исследованиях [1]. 

Внутривенные инфузии различных препаратов необходимы в совре-

менном лечении они всегда идут в составе комплексного лечения [3].   

Частый отбор крови затруднителен у данного вида животных из-за то-

го, что свиней тяжело фиксировать, а также многие вены не подходят для 
долгосрочных инфузий и установки внутривенного катетера на долгое время [
4]. Длительная катетеризация требует специфического подхода, поскольку 
катетеры должны быть устойчивы к механическим повреждениям и 
инфекциям в течение длительного времени [2]. 

Целью исследования было усовершенствование метода длительной 

катетеризации яремной вены у свиней. 

Исследование проводилось на базе доклинического центра «АО «НПО 

«ДОМ ФАРМАЦИИ». 

В качестве объекта исследования использовались самцы возрастом от 

1 года, массой 30-35 кг, в количестве 15-ти голов. Животные получали стандартный 
уход и двукратное кормление влажной кормовой смесью, состоящей 
из комбикорма СКК - 58, травяной муки, сухой молочной сыворотки, а 
также в рацион добавлялось яблоко и морковь. Животные содержались в 
боксах, делящихся на четыре индивидуальных вольера. 

Перед проведением катетеризации животные лишались корма на  

16 часов.  

Анестезию проводили внутримышечной инъекцией смеси препаратов 

Золетил (2 мг/кг) и Ксила (5 мг/кг) в одном шприце. 

Место установки катетера обрабатывали раствором йода 5 %. 
Последовательность выполнения манипуляции была следующей: 
1. При помощи иглы (18G x 7 см) со шприцом производится вкол в 

область яремной ямки. 

2. Оттягиваем поршень шприца, индикатором попадания иглы в ярем-

ную вену будет кровь темно вишневого цвета. Шприц отделяем от иглы (игла 
остается в точке вкола). 

3. В канюлю иглы вводим проводник (J 035 x 60 см, производитель 

Balton Sp. z o.o.) на длину 20 см. 

4. Проводник установлен. 

5. С помощью дилататора (6F х 12 см производитель Balton Sp. z o.o.) 

расширяем входное отверстие. 

6. По проводнику проводим одноканальный катетер (5F х 20 см про-

изводитель Balton Sp. z o.o.) до упора и извлекаем проводник. 

7. При помощи шприца проверяем проходимость катетера, индикато-

ром также послужит поступление крови в шприц. 

8. Подшиваем катетер к коже, ближе к грудной кости двумя простыми 

узловатыми швами, и выводим его на вентральную часть шеи и далее делаем 
там еще один простой узел у начала катетера.  

 

 

Рис. 1. Установка катетера в яремную вену карликовой свинье 
 
Таким образом, при правильной фиксации катетера швами, он не вы-

падает, не имеет изломов и загибов, что дает полную функциональность катетера 
на протяжении 10 дней. 

В данном методе не требуется препарирование яремной вены, что 

несет животному уменьшение боли и стресса, а также нет риска инфицирования 
раны. 

Так как время катетеризации не занимает большого количества време-

ни и не подразумевает под собой операционных ран, процедура занимает  
10-15 минут, а также долгосрочной и глубокой анестезии не требуется. 

Свиньи перенесли манипуляцию хорошо, выпадение катетера не 

наблюдалось, осложнения отсутствовали, в связи с чем манипуляция может 
быть рекомендована для рутинной практики. 

Список источников 
1. Применение витальных методов исследования как промежуточных 
точек в доклинических испытаниях фармацевтических препаратов на 
модели карликовых свиней / Д. Ю. Акимов, М. Н. Макарова,  
Я. А. Гущин, В. М. Косман // Лабораторные животные для научных 
исследований. – 2021. – № 1. – С. 68-77.  
2. Вачнадзе, Д. И. Анестезиологическое пособие у свиней как модельного 
объекта в медико-биологических и биотехнологических исследованиях / 
Д. И. Вачнадзе, Д. Г. Брешенков, С. С. Дыдыкин // Вопросы 
реконструктивной и пластической хирургии. – 2016. – Т. 19. – № 4(59). 
– С. 37-46. 
3. Комплексная терапия острой формы панлейкопении / В. В. Веретенников, 
Н. В. Тарлавин, Д. А. Красков, А. Б. Айдиев // Вопросы 
нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2021. – № 3. – 
С. 39-41.  
4. The role of triterpene acids in boar reproduction / A. Filatov,  
N. Shemuranova, I. Konopeltsev [et al.] // Theriogenology. – 2019. – Vol. 
137. – P. 134.  

 

УДК 616.9:636.5(470.0) 

НОЗОЛОГИЧЕСКИЙ ПРОФИЛЬ  
ЗАРАЗНОЙ ПАТОЛОГИИ ПТИЦ  

В УСЛОВИЯХ ЦЕНТРАЛЬНОЙ ЧАСТИ  

РОССИЙСКОГО НЕЧЕРНОЗЕМЬЯ 

Березкин В.А. ветеринарный врач, «АО «НПО «ДОМ ФАРМАЦИИ»;  
Семененко Н.А., асп. каф. организации, экономики и управления ветеринарным 
делом, зав. каф .доц. Орехов Д.А. 

 

 
Болезни инфекционной патологии являются постоянной угрозой для 

птицеводства во всем мире, так как многие патогены способны приспосабливаться 
ко множеству различных факторов окружающей среды, что приводит 
к развитию устойчивости микроорганизма [2]. Также, не смотря на доступность 
большого количества вакцин и различных антибиотических препаратов 
нового поколения, вопрос о эпизоотическом благополучии птицеводческих 
хозяйств остается всегда открытым [4].  
 
Многие ученые изучали и описывали противоэпизоотические меро-

приятия по одной нозоформе инфекционной патологии птиц на конкретной 
территории [1;3].  
 
Собрав и проанализировав статистические материалы о заболеваемости 

инфекционными агентами в конкретном регионе, был составлен нозологический 
профиль суммарной заразной патологии птиц и визуализировать его с 
помощью линейно-графических схем моделей, изображенных на рисунках 1-2. 

Таблица 1 

Нозологического профиль заразной патологии птиц  

в районе Среднего Поволжья в последнем десятилетии  

(относительные среднегодовые показатели, %) 

№ п/п

Нозоформы, 
формирующие 

нозологический профиль 
заразной патологии птиц в 

условиях Среднего 

Поволжья

Долевое участие в 
нозологическом 

профиле к общему 

количеству 

эпизоотических 

очагов

Степень вовлечения 
сочленов популяции в 

эпизоотическое проявление 

нозоединицы 

(к среднегодовой 

заболеваемости птиц 
заразными болезнями)

1
Эшерихиоз
32,6
28,6

2
Листериоз
3,6
0,8

3
Холера
3,1
0,9

4
Сальмонеллез
13,6
3,1

5
Туберкулез
5,3
2,3

6
Болезнь Марека
16,6
28,1

7
Аспергиллез
5,8
3,4

8
Аскаридоз
3,9
3,6

9
Гетеракидоз
3,9
3,6

10
Капилляриоз
1,7
1,8

11
Эймериоз
8,3
23,0

12
Малофагоз
1,6
0,8

n=12
∑=100, М=8,3±0,41
∑=100, М=8,33±0,36

 

0

5

10

15

20

25

30

35

 Рис. 1. Схема-модель нозологического профиля заразной патологии 

птиц в условиях пригородной зоны Среднего Поволжья 
(территориальные границы за последнее десятилетие) 

0

5

10

15

20

25

30

35

 Рис. 2. Схема-модель формирования популяционных границ 

нозологического профиля заразной патологии в условиях  

промышленного птицеводства в пригородной зоне  

Среднего Поволжья за последнее десятилетие 

 

 
Из изученных данных видно, что в общей совокупности эпизоотиче-

ских очагов доминирует эшерихиоз (32,6%), болезнь Марека (16,6%), сальмонеллез (
13,6%), а по степени вовлечения сочленов популяции в эпизоотическое 
проявление конкретных нозоформ доминирует болезнь Марека 
(28,1%), затем эймериоз (26,2%) и эшерихиоз (28,6%) и, практически, на порядок 
ниже – сальмонеллез (Таблица 1). 
 
Составив схемы-модели можно увидеть, что количество эпизоотиче-

ских очагов заразной патологии птиц – 62,8% - приходится на 3 нозоедини-
цы (эшерихиоз, сальмонеллез и болезнь Марека). По уровню вовлеченности 
сочленов популяции птиц в эпизоотическое проявление нозоединиц сальмонеллез 
значительно уступает эймериозу. По этому показателю в регионе доминируют 
эшерихиоз, эймериоз и болезнь Марека (79,9% от общего количества 
заболевших заразными болезнями птиц). 
 
Таким образом, было подтверждено, что построением линейно-

графических схем-моделей можно визуализировать нозологический профиль 
заразной патологии птиц в целом, так и его составляющие, что создает 
базу и координаты совершенствования противоэпизоотической защиты и 
технологического обеспечения популяции птиц в строгой зависимости от 
степени эпизоотического риска в конкретных условиях места и времени. 

Список источников 

1. Противоэпизоотические мероприятия при туберкулѐзе птиц в городе 
Санкт-Петербурге / А. Б. Айдиев, Н. В. Тарлавин, В. В. Вере-

тенников, Д. А. Красков // Материалы 76-й международной научной 
конференции молодых ученых и студентов СПбГУВМ, Санкт-
Петербург, 04–11 апреля 2022 года. – Санкт-Петербург: Санкт-
Петербургский государственный университет ветеринарной медицины, 
2022. – С. 8-9. 
2.  Пробиотические чистящие средства для поверхностей как возможная 
альтернатива традиционным дезинфектантам / А. Г. Афино-
генова, Л. А. Краева, Г. Е. Афиногенов, В. В. Веретенников // Инфекция 
и иммунитет. – 2017. – Т. 7. – № 4. – С. 419-424.  
 3. Эпизоотическая ситуация по эймериозу у кур в Ленинградской 
области / О. В. Козыренко, Н. В. Мищенко, В. В. Веретенников,  
А. Б. Айдиев // Материалы национальной научной конференции профессорско-
преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов 
СПбГУВМ, Санкт-Петербург, 24–28 января 2022 года. – 
Санкт-Петербург: Санкт-Петербургский государственный университет 
ветеринарной медицины, 2022. – С. 37-39. 
4. Сравнительная оценка влияния вирджиниамицина и пробиотика на 
состав кишечного микробиома и зоотехнические показатели цыплят-
бройлеров (Gallus Gallus L.) / Д. Г. Тюрина, Г. Ю. Лапев, Е. А. Йыл-
дырым [и др.] // Сельскохозяйственная биология. – 2020. – Т. 55. –  
№ 6. – С. 1220-1232. 
 

УДК 614.484:614.449:619     

ОЦЕНКА ТОКСИЧЕСКИХ СВОЙСТВ ДЕЗИНФЕКТАНТОВ 

ЛИНЕЙКИ «ДЕЗОН», ПРИМЕНЯЕМЫХ  

ДЛЯ НЕСПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ АЧС 

Боталова Д.П. асп. 2 к.; Кузьмин В.А. д.в.н., проф.; Павленко Г.И. к.б.н.; 
Ципле С.Ю. рук. проекта ООО «Дезон», каф. эпизоотологии им. В.П. Урбана, 
зав. каф. доц. Фогель Л.С. 
 

Африканская чума свиней (АЧС) является трансграничной, контаги-

озной, природно-очаговой, крайне опасной вирусной болезнью для домашних 
свиней и диких кабанов и имеет высокий потенциал распространения на 
благополучные территории [0]. Ввиду отсутствия на территории нашей 
страны и за рубежом средств специфической профилактики  – вакцин и сывороток  – 
АЧС на сегодняшний день не поддается эпизоотологическому 
мониторингу и контролю ее распространения, а больное поголовье подлежит 
тотальному уничтожению в эпизоотическом очаге и первой угрожаемой 
зоне [0]. Поэтому только технологии  неспецифической профилактики – 
жѐсткое  соблюдение общих ветеринарно-санитарных мер  с присвоением 
свиноводческому предприятию зоосанитарного статуса (компартмента) и 
дезинфекционные мероприятия – в настоящее время  играют одну из ведущих 
ролей  в профилактике АЧС и борьбе с ней [1].    

Качество проводимой дезинфекции в большей степени зависит от 

наличия высокоэффективных экологически безопасных биоцидов, уничтожающих 
патогенных микроорганизмов и подавляющих их  рост и размножение [
4]. Многие животноводческие предприятия постепенно отказываются 
от применения для дезинфекции традиционных средств (хлорсодержащие 
соединения, формальдегид и др.) в силу их токсичности, агрессивного кожно-
резорбтивного и аллергенного действия [6]. В ветеринарной практике 
специалисты проявляют интерес к композиционным дезинфектантам, так 
как последние содержат в своем составе несколько совместимых между собой 
активных действующих веществ из различных групп соединений, что 
делает многокомпонентные смеси более экологически безопасными и более 
эффективными в значительно меньших концентрациях, чем стандартные 
монокомпонентные соединения [3,5].  

Цель исследований – лабораторные испытания современных россий-

ских композиционных дезинфектантов «Дезон Ветклин», «Дезон Вет» и 
«Дезон Триавет» по определению острой и субхронической токсичности, 
кожно-резорбтивного и аллергенного действия. 

Лабораторные исследования дезинфицирующих средств (ДС) прово-

дили на базе вивария ВНИИВСГЭ.   

В качестве действующих веществ «Дезон «Ветклин» содержит глу-

таровый альдегид, глиоксаль, четвертичные аммониевые соединения (далее 
– смесь ЧАС) – алкилдиметилбензиламмоний хлорид и дидецилдиметилам-
моний хлорид; «Дезон Вет» – тетраметилендиэтилентетрамин (ТМДТ), 
смесь ЧАС; «Дезон Триавет» - N,N-бис-(3-аминопропил)додециламин, ал-
килдиметилбензиламмоний хлорид, полигексаметиленгуанидин гидрохлорид, 
а также моющий компонент – алкилполиглюкозид. 

Для опыта использовали половозрелых белых беспородных мышей 

массой 20±3 г; половозрелых беспородных белых крыс (самцов) массой 
195±10 г; кроликов породы новозеландская белая массой 2500±150 г. До 
начала исследований всех животных на период адаптации сроком 14 дней 
поместили в отдельную комнату  и  в течение указанного срока у них контролировали 
проявление отклонений в показателях жизненно важных 
функций.   

Согласно инструкциям по применению, ДС «Дезон Ветклин», «Дезон 

Вет» и «Дезон Триавет» предполагается использовать в форме 5% водного 
раствора путем мелкодисперсного орошения или протирания поверхностей 
технологического оборудования в отсутствии животных и птицы.  

Токсические свойства ДС изучали по единой методике в отношении 

каждого дезинфектанта. Определение острой токсичности препаратов проводили 
на лабораторных животных путем введения нескольких доз средства 
в желудок подопытных с помощью металлического зонда. Контрольной 
группе животных давали воду в тех же объемах. В течение двух недель после 
опыта за животными вели наблюдение, учитывая общее состояние здоровья 
крыс, отмечая сроки гибели или выздоровления животных.  

Для изучения кумулятивных свойств препаратов использовали ме-

тод, принятый для нетоксичных соединений, предусматривающий введение 
ДС в условиях повторного двухнедельного эксперимента в дробных дозах 
от максимально-переносимой (МПД). Для этого исследуемые дезинфектан-
ты вводили в виде 5%-го водного раствора каждый группам подопытных 
крыс в дозе, составляющей 1/5 от 10,0 г/кг (МПД), т.е. 2,0 г/кг массы тела. 

Кожно-резорбтивное действие препарата изучали в повторном опыте 

на белых мышах. Для этого животных поместили в специальные домики, а 
хвосты у животных подопытной группы ежедневно на протяжении 14 дней в 
экспозиции 2 часа на 2/3 длины погружали в пробирки с дезинфектантами 
«Дезон Ветклин» и «Дезон Триавет» в концентрации 1,5% каждый, «Дезон 
Вет» - 2,5%. Животных контрольной группы поместили в те же условия, однако 
их хвосты погружали в воду.  

Исследование раздражающего действия на слизистые оболочки глаз 

испытуемых дезсредств проводили на кроликах. Для оценки влияния препаратов «
рекомендуемую» производителями/«рабочую» (5%)  концентрацию 
каждого дезсредства в количестве 3-х капель вводили в конъюнктивальный 
мешок правого глаза животных. Левые глаза являлись контролем. Наблюдали 
за животными в течение 2-х недель. Оценку раздражающего действия 
оценивали по изменению кровенаполнения конъюнктивы, состояния роговицы 
и радужной оболочки, а также по количеству выделений из глаз. Контрольной 
группе животных вводили дистиллированную воду в том же количестве. 


Исследование аллергического действия препаратов проводили путем 

20-ти повторных накожных аппликаций на кожу кролика. Препараты «Дез-
он Ветклин» и «Дезон Триавет» испытывали в концентрации 1,5%, «Дезон 
Вет» - 2,5%.   

В результате введения испытуемых в концентрации 5% каждого ДС в 

желудок подопытных крыс и мышей в диапазоне доз 3-10 г/кг гибели животных 
не отмечали, следовательно, дозу 10 г/кг можно считать максимально-
переносимой дозой (МПД) для «рабочей» концентрации «Дезон Вет-
клин», «Дезон Вет» и «Дезон Триавет». 

В условиях субхронического двухнедельного экспериментов все три 

дезсредства в «рабочей» 5% концентрации не вызвали гибели животных, что 
указывает на отсутствие кумуляции препаратов. 

С учетом полученных в подостром эксперименте на уровне действия 

высоких доз, в несколько раз превышающих реальные, изменений функциональных 
показателей, опасность испытуемых ДС линейки  «Дезон» для животных 
и людей в условиях реального использования незначительна.   

В однократном эксперименте при исследовании кожно-резорбтив-

ного действия препаратов ДС не вызвали раздражения кожи у кроликов.  

При однократном введении в конъюнктивальный мешок глаза кроли-

ков растворов дезпрепаратов «Дезон Ветклин» и «Дезон Вет» в водной концентрации 
5% не проявили выраженного раздражающего действия.  «Дезон